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<journal-title><![CDATA[Revista Técnica de la Facultad de Ingeniería Universidad del Zulia]]></journal-title>
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<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Cassava conservation (Manihot esculenta) with edible film based on banana peel flour]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="es"><p><![CDATA[La yuca es un producto que tiende a sufrir muchas pérdidas poscosecha debido al alto riesgo de deterioro fisiológico y microbiológico, lo cual limita su transportación y causa considerables pérdidas a productores y comerciantes. En el presente estudio se trabajó con un recubrimiento de harina de cáscara de plátano - ácido salicílico (CP+AS) y se comparó con el parafinado tradicionalmente utilizado, en las siguientes variables: pérdida de peso, índice de deterioro, firmeza, color y desarrollo fúngico durante siete semanas de almacenamiento a 8°C y 70% de humedad relativa. El parafinado resultó ser mucho más eficaz que el recubrimiento de CP+AS para controlar la pérdida de peso ya que se obtuvieron valores de 9,57% y 47,03% respectivamente después de 7 semanas de almacenamiento. El índice de deterioro presentó un valor de cero correspondiente a un producto sin alteraciones y el color no sufrió variaciones significativas durante el almacenamiento. La firmeza de las yucas estuvo en valores de 5,76 N y 6,13 N en los recubrimientos de parafina y CP+AS respectivamente, sólo se observaron diferencias significativas en la semana 7 de almacenamiento. El recubrimiento de CP+AS resultó más eficaz para controlar el desarrollo fúngico después de siete semanas de almacenamiento.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="center"><font face="Verdana"><b>Cassava conservation  (Manihot esculenta) with edible film  based on banana peel flour</b></font></p>     <p align="center"><font face="Verdana" size="2"> <b>Conservación de yuca  (Manihot esculenta) con recubrimiento a  base de harina de cáscara de plátano</b></font></p>     <p align="center">&nbsp;</p>     <p align="center"><font face="Verdana" size="2"> Karla Meneses Portilla, Stalin Santacruz Terán, José Coloma Hurel *</font></p>     <p align="center"><font face="Verdana" size="2"> Universidad Laica Eloy Alfaro de Manabí, Avenida Circunvalación s/n, Manta,  Ecuador.  P.O. Box 13-05-2732 * Autor para correspondencia: +593 980082417. Correo electrónico:  <a href="mailto:colomapancho@hotmail.com">colomapancho@hotmail.com</a></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"> <b>Abstract</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"> Cassava is a crop that suffers physiological and microbiological damages,  leading to high postharvesting losses, and  causing economical loss to producers. In the present work, edible film based on  plantain flour-salicylic acid (CP + AS) was  studied and compared with paraffin treatment. Weight loss, disease severity  firmness, color and microbiological analysis  (fungi) along seven weeks of storage at 8°C and 70% relative humidity were  studied. The use of paraffin showed to be better  compared to CP + AS against weight losses reaching 9.57% and 47.03% respectively,  and had no statistical differences along  storage. Disease severity and color showed no statistical changes.  Firmness of cassava samples treated with CP+AS reached  5.76 N and 6.13 N for paraffin and showed no statistical changes.  CP+AS film showed to be better to control fungi along seven  weeks of storage.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"> <b>Key words:</b> edible film, cassava starch, salicylic acid, paraffin.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"> <b>Resumen</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"> La yuca es un producto que tiende a sufrir muchas pérdidas poscosecha debido al  alto riesgo de deterioro fisiológico y  microbiológico, lo cual limita su transportación y causa considerables pérdidas  a productores y comerciantes. En el presente  estudio se trabajó con un recubrimiento de harina de cáscara de plátano – ácido  salicílico (CP+AS) y se comparó con el  parafinado tradicionalmente utilizado, en las siguientes variables: pérdida de  peso, índice de deterioro, firmeza, color y  desarrollo fúngico durante siete semanas de almacenamiento a 8°C y 70% de  humedad relativa. El parafinado resultó ser  mucho más eficaz que el recubrimiento de CP+AS para controlar la pérdida de peso  ya que se obtuvieron valores de 9,57%  y 47,03% respectivamente después de 7 semanas de almacenamiento. El índice de  deterioro presentó un valor de cero  correspondiente a un producto sin alteraciones y el color no sufrió variaciones  significativas durante el almacenamiento. La  firmeza de las yucas estuvo en valores de 5,76 N y 6,13 N en los recubrimientos  de parafina y CP+AS respectivamente, sólo  se observaron diferencias significativas en la semana 7 de almacenamiento. El  recubrimiento de CP+AS resultó más eficaz  para controlar el desarrollo fúngico después de siete semanas de almacenamiento.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2"> <b>Palabras clave: </b>recubrimiento comestible, almidón de yuca, ácido salicílico, parafina.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Recibido el 07 de Noviembre de 2016 En forma revisada el 03 de Abril de 2017</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b> Introducción</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"> La yuca es un tubérculo perteneciente a la familia  Euforbiácea y al género Manihot, siendo de la especie  M.  esculenta Crantz ; la que es conocida comercialmente en el  mundo. Es un cultivo perenne con alta producción de raíces  tuberosas, como fuente de carbohidratos y follajes [1] .  Según el Censo Nacional Agropecuario realizado en el año  2000 [2], en Ecuador las provincias con mayor producción  de yuca son: Zamora Chinchipe, Morona Santiago y  Santo Domingo de los Tsáchilas con 17031; 12909 y  11896 toneladas métricas anuales respectivamente. Las  raíces de yuca se deterioran rápidamente, sufriendo  dos tipos de deterioro, uno fisiológico que se evidencia  a través del cambio de color de blanco a café y otro  microbiano que consiste en pudriciones causadas por  hongos principalmente, volviéndose inaceptables para el  consumo humano o para otros usos [3].</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"> Uno de los tratamientos poscosecha utilizados  actualmente para la conservación de la yuca es mediante  el uso de recubrimientos a base de parafina. Un  recubrimiento comestible es una película que envuelve  al alimento y que puede ser consumida como parte del  mismo [4]. Se lo puede definir como una matriz continua,  delgada, que se estructura alrededor del alimento  generalmente mediante la inmersión del mismo en una  solución formadora del recubrimiento [5]. La aplicación  de recubrimientos comestibles supone una alternativa  para la conservación de la calidad de frutas y hortalizas.  Su aplicación permite alargar la vida útil durante el  almacenamiento al reducir las pérdidas de humedad  y ralentizar la maduración de los frutos, ya que actúan  como barrera al intercambio gaseoso. También se utilizan  para mejorar su integridad mecánica o protección frente  a la manipulación posterior [6] . </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Pueden ser elaborados  a partir de carbohidratos, proteínas, grasa o por  combinación de los anteriores, siendo el almidón uno  de los materiales más utilizados para la elaboración de  recubrimientos.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"> La cáscara del fruto de plátano constituye un  subproducto de su procesamiento, posee mayor contenido  de fibra y de minerales que la pulpa, su alta composición  de almidón en estado inmaduro y de azúcares en estado  maduro, determinan la posibilidad de que pueda ser  procesado como harina para la elaboración de productos  comestibles para humanos [7] . </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Estructuralmente, el  almidón consiste de dos polisacáridos químicamente  distinguibles: la amilosa y la amilopectina. Ambos  formados por unidades de glucosa, donde la amilosa  es un polímero lineal unida entre ella por enlaces  &#945; (1- 4). Esta molécula no es soluble en agua, pero puede  formar micelas hidratadas por su capacidad para enlazar  moléculas vecinas por puentes de hidrógeno y generar  una estructura helicoidal. La amilopectina es un polímero  ramificado, parcialmente soluble en agua caliente y está  unida en un 94-96% por enlaces  &#945; (1-4) y en un 4-6%  con uniones  &#945; (1-6) [8] .</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"> El almidón de plátano presenta  adecuadas propiedades de formación de película debido  principalmente a su contenido de amilosa considerado  como alto (35%) lo que repercute en la obtención de  películas con mayores propiedades mecánicas [9] . </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  El ácido salicílico (AS) es un metabolito secundario  producido por una amplia gama de organismos procariotas  y eucariotas incluyendo plantas. Químicamente  pertenece a un grupo de compuestos fenólicos definido  como sustancias que poseen un anillo aromático, grupo  hidroxilo o su derivado funcional [10] .</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2"> Estudios realizados  por Ding y Wang [11] apoyan las principales funciones de  salicilatos en la modulación de la respuesta de la planta a  varios estreses abióticos, tales como la luz ultravioleta, la  sequía, la salinidad y la refrigeración. </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Los salicilatos en las plantas juegan un papel  importante debido a que otorgan resistencia a las mismas  ante enfermedades; en especial el ácido salicílico es un  activador de las defensas en las plantas contra hongos,  virus, bacterias, nemátodos e insectos [12] .</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"> En frutos  como el níspero, la inmersión por 20 min en 1 g L -1  de AAS  inhibió el incremento de lignina y evitó la reducción de la  firmeza [13] .</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"> En la actualidad el principal método de conservación  que utilizan las empresas agroexportadoras de yuca en el  Ecuador es la aplicación de recubrimientos de parafina,  sin embargo, este método revela inconvenientes desde  el punto de vista ambiental, debido a que es un derivado  del petróleo y además se aplica a temperaturas elevadas,  superiores a 120°C [14].</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"> El objetivo principal de la presente investigación  consistió en evaluar un recubrimiento elaborado  con harina de cáscara de plátano y ácido salicílico  en la conservación de yuca  (Manihot esculenta) en  comparación con el parafinado tradicional en cuanto al  deterioro fisiológico y microbiano. Para ello se evaluó  la pérdida de peso, índice de deterioro, firmeza, color  y desarrollo fúngico INEN. 1529-10 [15] de la yuca  recubierta y almacenada durante siete semanas a 8°C y  70% de humedad relativa</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"> <b>Parte Experimental</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"> La yuca que se utilizó en la investigación fue de  la variedad valenciana, la cual fue adquirida en la  ciudad de Santo Domingo de los Tsáchilas a la empresa  agroexportadora Platayuc Cia. Ltda. En la recepción  del producto se realizó un control visual para asegurar  características de calidad adecuadas en cuanto a tamaño,  forma, color, firmeza, ausencia de magulladuras y cortes.  Los tubérculos que presentaron alguna característica  indeseable tales como magulladuras, cortes, deformidades  y crecimiento fúngico, fueron retirados. Se realizó una  limpieza en seco utilizando cepillos de acuerdo al método  propuesto por Medina S  et al , [14] con el fin de extraer la  mayor cantidad de tierra contenida en la superficie de la  yuca. </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Finalmente se almacenaron a 8°C y 70% de humedad  relativa (HR) durante siete semanas. Se realizaron  análisis fisicoquímicos y microbiológicos semanalmente.  Las yucas recubiertas con parafina fueron adquiridas  a la empresa agroexportadora. El recubrimiento con  parafina se realizó por inmersión en parafina a 140°C. Las  condiciones de almacenamiento y los análisis se describen  a continuación. </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  <b>Preparación del recubrimiento</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"> La solución de recubrimiento de cáscara de plátano  y ácido salicílico (CP+AS) se elaboró de acuerdo a la  metodología propuesta por Anchundia K. et al [16]  disolviendo 0,5 g de harina de cáscara de plátano en 100  ml de agua destilada con calentamiento hasta 90 °C y  agitación constante. Una vez alcanzada esta temperatura se  adicionó 2,5 mmol/L de ácido acetilsalicílico manteniendo  la temperatura durante 5 min. Finalmente se dejó enfriar  la solución hasta 50 °C y se homogenizó en ultraturrax  (Polytron, Suiza) a 11000 rpm por 4 minutos. Las yucas se  recubrieron por inmersión en la solución preparada y se  secaron a temperatura ambiente por 30 minutos.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2"> <b>Pérdida de peso </b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Se calculó la pérdida de peso porcentual semanalmente  mediante la relación del peso inicial y final de la yuca a  través de la ecuación 1. </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  <img border="0" src="/img/fbpe/rtfiuz/v40n2/art06.7.jpg" width="402" height="81"></font></p>     
<p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2"> Índice de deterioro</font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"> Se cortaron transversalmente los tubérculos y se  tomaron fotografías para determinar los siguientes  niveles de deterioro mediante la escala descrita por Sotelo  R. y Acevedo G. [1] con algunas modificaciones.  0 – sin manchas ni estrías, superficie totalmente sana y  de color blanco.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"> 1 – puntuaciones azuladas con una cobertura de hasta un  25% de la superficie.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"> 2 – puntuaciones azuladas de mayor diámetro, alcanzando  hasta 50% de la superficie.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"> 3 – aparición de zonas marrones con ablandamiento de la  pulpa, afectada hasta en un 75%.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"> 4 – total putrefacción de la raíz, con una afectación del  100%.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"> <b>Firmeza</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2"> Se realizó de acuerdo al método descrito por Castro M.  et al [17]. El análisis se realizó con un texturómetro marca  Shimadzu (Modelo EZ LX, Japón). El parámetro medido  fue la fuerza máxima de penetración expresada en Newton  (N). Se empleó un punzón de 3 mm de diámetro y 8 cm de  longitud que se desplazó a una velocidad de 20 mm/s con  una penetración de 15 mm en la muestra. Para el análisis  se seleccionaron al azar diferentes muestras a las cuales  se les quitaron la cáscara y se las cortaron en cubos de 3  cm de lado. Las muestras posteriormente fueron lavadas,  sometidas a cocción en agua en estado de ebullición  durante 10 min y sometidas al análisis. </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  <b>Color</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"> Se realizaron valoraciones colorimétricas sobre la  pulpa, en yucas cortadas transversalmente de acuerdo al  método descrito por Atzingen M.  et al., [18] en donde las  medidas de color fueron expresadas por las coordenadas  obtenidas a partir del sistema CIE- L* a* b*</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"> Dónde: L* = Eje vertical que presenta la luminosidad del color  (claridad), donde cero indica negro y cien representa al  color blanco.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"> a* = Tendencia del verde (-) al rojo (+) en el eje x, b* = tendencia del azul (-) al amarillo (+) en el eje y</font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2"> Mohos y levaduras</font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"> Se realizó de acuerdo a la norma INEN. 1529-10 [15].  Se incubó el inóculo a 30ºC durante 5 días y se cuantificó el  número de unidades propagadoras de mohos y levaduras.</font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2"> Análisis estadísticos</font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"> Se realizó análisis de varianza al 5% (ANOVA) y  prueba de Tukey (p&lt;0,05) para establecer diferencias  estadísticas entre los tratamientos a través del paquete  estadístico Infostat 2008. Todos los análisis se realizaron  por triplicado.</font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2"> Resultados y Discusión</font></b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2"> La <a href="#t1">tabla 1</a> muestra que la pérdida de peso durante 7  semanas de almacenamiento fue mucho más baja cuando  las yucas fueron recubiertas con parafina (9,57%) en  comparación con el recubrimiento de CP+AS (47,03%).  Esto puede deberse a que el recubrimiento de CP+AS por  su naturaleza hidrocoloide permite el paso del agua a  través del film. Los polisacáridos son una barrera para el  O 2 , y el CO 2 , pero son permeables al vapor de agua debido  a su carácter hidrofílico [19], mientras que la parafina  al pertenecer al grupo de los lípidos es de carácter  hidrofóbico, por ende es una excelente barrera al vapor  de agua [20] .</font></p>     <p align="justify"><a name="t1"></a></p>     <p align="center"><img border="0" src="/img/fbpe/rtfiuz/v40n2/art06.8.gif" width="647" height="300"></p>     
<p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"> Medias con letra común no son significativamente diferentes La comparación estadística corresponde a los tipos de recubrimientos La investigación realizada por Sánchez J.  et al., [21] acerca de los efectos fisiolóficos en la yuca utilizando  recubrimiento a base de parafina bajo conservación en  frío, obtuvo una pérdida de peso de 2,83% a los 15 días  de almacenamiento, el cual es un resultado muy similar  al encontrado en la presente investigación. De acuerdo  a Ospina B. y Cevallos H.[22], el proceso de parafinado  mantiene a la yuca fresca, sin cambios notables en sus  características durante un lapso de 20 a 30 días. La  efectividad del recubrimiento de CP+AS para evitar el  deterioro de la yuca se debió probablemente a la acción  sinérgica entre la harina de cáscara de plátano y al AS. La  cáscara de plátano es un material rico en almidón, que  actúa como barrera al O 2 y CO 2  [9] Romero mientras que el  ácido salicílico ha demostrado ser efectivo para controlar  la senescencia en peras [23] Asghari y manzanas [24] Mo. </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  De acuerdo a la <a href="#t2">tabla 2</a>, la firmeza de las yucas  parafinadas y con recubrimiento de CP+AS no presentaron  diferencia significativa a lo largo de 6 semanas de  almacenamiento. En la semana 7 se encontró diferencia  estadística en ambos casos. La fuerza de penetración  en todos los casos aumentó en función del tiempo de  almacenamiento. </font></p>     <p align="justify"><a name="t2"></a></p>     <p align="center"><img border="0" src="/img/fbpe/rtfiuz/v40n2/art06.9.gif" width="642" height="305"></p>     
<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Medias con letra común no son significativamente diferentes La comparación estadística corresponde a los tipos de recubrimientos La fuerza máxima de penetración para la yuca  recubierta con CP+AS fue mayor que la elaborada con  parafina, esto se podría explicar debido a la acción del  ácido acetilsalicílico, el cual es un compuesto fenólico que  se ha demostrado capaz de mantener la firmeza del kiwi  [25] y banana [26]. Se ha demostrado que el ácido salicílico  inhibe la acción de enzimas degradantes de la pared  celular tales como la poligalacturonasa, lipoxigenasa,  celulasa y pectinmetilesterasa, lo que conlleva a la  disminución de la velocidad de ablandamiento de frutas  [26], [27].</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"> La <a href="#t3">tabla 3</a> muestra los valores de luminosidad de  las yucas tratadas con recubrimientos de parafina y CP+AS. Los valores obtenidos fueron de 86,75 y 86,84  respectivamente al final del almacenamiento y no se  encontraron diferencias significativas en ningún caso. Los  resultados de color corroboran los obtenidos en el índice  de deterioro y en la firmeza, notándose ninguna variación  estadística significativa de estas características fisiológicas  a lo largo del almacenamiento. Estudios realizados en  castañas muestran que se retrasó la pérdida de color  debido a la aplicación poscosecha de ácido salicílico [28]. </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><a name="t3"></a></p>     <p align="center"><img border="0" src="/img/fbpe/rtfiuz/v40n2/art06.10.gif" width="651" height="320"></p>     
<p align="justify"><font face="Verdana" size="2"> La <a href="#f1">figura 1</a> muestra que el crecimiento de mohos y  levaduras disminuyó a los largo del almacenamiento en  todos los casos. No se encontró diferencia significativa en  las yucas recubiertas con parafina mientras que cuando  se aplicó el recubrimiento de CP+AS la diferencia fue  significativa en la semana 7. La mayor efectividad del  recubrimiento de CP+AS podría explicarse por la aplicación  exógena de ácido salicílico, que a concentraciones no  tóxicas, en el caso de frutas y vegetales, ha conseguido  incrementar la resistencia a patógenos y ralentizar el  deterioro poscosecha [23], [29], [30]. Así mismo diversos  estudios demuestran que el ácido salicílico ha sido  efectivo en el control fúngico de fresas [30]; cereza dulce  [31], melones [32].</font></p>     <p align="justify"><a name="f1"></a></p>     <p align="center"><img border="0" src="/img/fbpe/rtfiuz/v40n2/art06.11.jpg" width="579" height="457"></p>     
<p align="justify"><font face="Verdana" size="2"> <b>Conclusiones</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"> Después de 7 semanas de almacenamiento, el  recubrimiento elaborado a partir de CP+AS otorgó mayor  firmeza (6,13 N), mantuvo invariable el color e inhibió el  crecimiento fúngico en mayor medida (86,6 x10 3  ufc/g)  que el recubrimiento de parafina (273,3 x 10 3 ufc/g). Sin  embargo, se debe estudiar la adición de otro compuesto  de naturaleza lipofìlica para el control de la pérdida de  peso, ya que el recubrimiento de CP+AS demostró no tener  buenas propiedades de barrera al vapor de agua, ya que  obtuvo 47,03% de pérdida de peso en comparación con  el 9,57% del recubrimiento a base de parafina. El uso  de ácido salicílico en combinación con recubrimientos  comestibles es una tecnología a considerar para el control  del deterioro poscosecha de la yuca por sus cualidades  para el control de la firmeza, color y crecimiento fúngico.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"> <b>Referencias Bibliográficas</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"> [1]  Sotelo R. y Acevedo G.: “Conservación de las raíces  frescas de la yuca ( Manihot esculenta Crantz )  aplicándole el proceso de parafinado”. Nexo Revista  científica, Vol 21 No. 2 (2009) 48-53.  &nbsp;</font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">[2]  INEC, I. N. Censo Nacional Agropecuario. INEC.  Quito, 2012.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2399688&pid=S0254-0770201700020000600002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> &nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">[3]  Aristizábal J. y Sánchez T. “Guía técnica para  producción y análisis de almidón de yuca”. Boletín  de Servicios Agrícolas de la FAO, Vol. 163 (2007) 27  - 28.  &nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">[4]  Pastor C., Vargas M., y González-Martínez C.:  “Recubrimientos Comestibles: Aplicación a frutas y  hortalizas”. Alimentación, Equipos y Tecnología, Vol.  197 No. 24 (2005) 130 – 135. </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  [5]  Ramos M. Bautista S. y Barrera L.: “Compuestos  antimicrobianos adicionados en recubrimientos  comestibles para uso en productos hortofrutícolas”.  Revista Mexicana de Fitopatología, Vol. 28 No. 1  (2010) 44 – 57.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"> [6]  Krochta J. y Mulder-Johnston C.: “Edible and  biodegradable polymer films: challenges and  opportunities”. Food Technology, Vol. 51 (1997) 61- 74.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"> [7]  Arcila M., Giraldo G., Belalcázar SL, Cayón G. y  Méndez JC.: “Comportamiento postcosecha de  los plátanos Dominico Hartón y FHIA 21 en  diferentes presentaciones”. Rev. Iber. Tecnología  Poscosecha, Vol. 3 No. 2 (2001) 140 – 143.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"> [8]  Hernández M., Torruco J., Chel L., y Betancur D.:  “Caracterización fisicoquímica de almidones de  tubérculos cultivados en Yucatán, México”. Ciencia y  Tecnología de Alimentos. Vol. 28 No.03 (2008) 718  – 726.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"> [9]  Romero C., Bellos L., García M., Martino M., Solorza- Feria J., y Zaritsky N.: “Physicochemical and  microstructural characterization of films prepared  by thermal and cold gelatinization from non –  conventional sources of starches” Carbohydrate  Polymers, Vol. 60 (2005) 235-244.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"> [10]  An C., y Mou Z. “Salicylic Acid and its Function  in Plant Immunity”. Journal of Integrative Plant  Biology, Vol. 53 No 6 (2011) 412-428. </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  [11]  Ding C. y Wang C. “De dual effects of methyl  salicylate on ripening and expression of ethylene  biosynthetic genes in tomato fruit”. Plant science,  Vol. 164 (2003) 589-596.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2"> [12]  Park S.: “Methyl salicylate is a critical mobile signal  for plant systemic acquired resistance”. Science, Vol.  318 (2007) 113-116.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"> [13]  Mercado J., Jara K., García J., y Báez R.: “Calidad de  esparrago verde en fresco ( Asparagus officinalis L.): Cubiertas comestibles y ácido acetilsalicílico”.  Revista Iberoamericana de Tecnología Postcosecha,  Vol. 14 No 2 (2013) 195-203.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"> [14]  Medina S., García L., Vélez C., Alonso L., y Fernández  A.: “Estudio comparativo de conservación de  yuca ( Manihot esculenta Crantz ) recubiertas con  cera natural y parafina”. Informador Tecnológico  (Colombia), Vol. 77 No 1 (2013) 17 – 21.</font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2"> [15] INEN. 1529-10. Control microbiológico de los  alimentos mohos y levaduras viables en placa por  siembra en profundidad. INEN, Quito (2013).    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2399702&pid=S0254-0770201700020000600015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> [16] Anchundia K., Santacruz S., y Coloma J.:  “Caracterización física de películas comestibles a  base de cáscara de plátano”. Rev Chil. Nutr., Vol. 43,  Nº4, (2016) 394 – 399.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"> [17]  Castro M., Rivadeneira C., Mantuano I., Santacruz  S., y Ziani K.: “Utilización de recubrimientos  comestibles a base de quitosano y Aloe Vera en  papaya ( Carica papaya L. cv. &quot; Maradol &quot;) cortada”.  Alimentos, Ciencia e Ingeniería, Vol. 22 No 2 (2014)  5 - 12.</font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2"> [18]  Atzingen M., y Machado M.: “Evaluación de la textura  y color de almidones y harinas en preparaciones sin  gluten”. Ciencia y Tecnología Alimentaria, Vol. 4 No  5 (2005) 319-323.  [19]  Castro, A.: “Efecto de la Aplicación de Recubrimientos  Comestibles en la calidad postcosecha de tomate  de árbol (solanum betaceum Cav.)”. Tesis previa  al título de ingeniera agroindustrial en la Escuela  Politécnica Nacional. Quito. 2013.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2399705&pid=S0254-0770201700020000600019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2"> [20]  Pastor, C.: “Recubrimientos comestibles a base de  Hidroxipropil meetilcelulosa”. Tesis Doctoral en  la Universidad Politécnica de Valencia. Valencia.  2010.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2399707&pid=S0254-0770201700020000600020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> [21] Sánchez J., Hennessey L., y Torres E.: “Efectos  fisiológicos de badea ( Passiflora quadrangularis ) y  yuca ( Manihot esculenta ) utilizando recubrimientos  a base de cera y parafina bajo conservación en  frío”. Revista Colombiana de Investigaciones  Agroindustriales, Vol. 1 No 1 (2014) 33-43.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2"> [22]  Ospina B., y Cevallos H.: “La yuca en el Tercer  Milenio: Sistemas Modernos de Producción,  Procesamiento, Utilización y Comercialización”.  Centro Internacional de Agricultura Tropical (CIAT)  Cali – Colombia. 2002.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"> [23]  Asghari M., Hajitagilo R., y Shirzad H.: “Postharvest  treatment of salicylic acid effectively controls pear  fruit diseases and disorders during cold storage”. In:  Proceedings of the international congress on Novel  approaches for the control of postharvest diseases  and disorders, (2007) 355-360. </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  [24] Mo Y., Gong D., Liang G., Han R., Xie J., y Li W.:  “Enhanced preservation effects of sugar apple  fruits by salicylic acid treatment during postharvest  storage”. Journal of the Science of Food and  Agriculture, Vol. 88 (2008) 2693 - 2699. </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  [25] Aghdam M., Mostofi Y., Motallebiazar A.,  Ghasemneghad M., y Fattahi J.: “Effects of MeSA  vapor treatment on the postharvest quality of  Hayward kiwifruit”. In 6 th International Postharvest  Symposium. (2009). Antalya, Turkey. </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">   [26]  Srivastava M., y Dwivedi U.: “Delayed ripening of  banana fruit by salicylic acid”. Plant Science, Vol. 158  (2000) 87 – 96. </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  [27]  Zhang Y., Chen K., Zhang S., y Ferguson I.: “The role  of salicylic acid in postharvest ripening of kiwifruit”.  Postharvest Biology and Technology, Vol. 28 (2003)  67 - 74. </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  [28]  Peng L., y Jiang Y.: “Exogenous salicylic acid inhibits  browning of fresh-cut Chinese water chestnut”. Food  Chemistry, Vol. 94 (2006) 535 - 540.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"> [29]  Asghari M., Hajitagilo R., y Jalilimarandi R.:  “Postharvest application of salicylic acid before  coating with chitosan affects the pattern of quality  changes in table grape during cold storage”. In 6th  International Postharvest Symposium, (2009)  Antalya, Turkey.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"> [30]  Babalar M., Asghari M., Talaei A., y Khosroshahi  A.: “Effect of pre and postharvest salicylic acid  treatment on ethylene production, fungal decay  and overall quality of Selva strawberry fruit”. Food  Chemistry, Vol. 105 (2007) 449 - 453.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"> [31]  Yao H., y Tian S.: “Effects of pre- and post-harvest  application of salicylic acid or methyl jasmonate on  inducing disease resistance of sweet cherry fruit in  storage”. Postharvest Biology and Technology, Vol.  35 (2005) 253 - 262. </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  [32]  Huang Y., Deverall B., Tang W., Wang W., y Wu F.:  “Foliar application of asilbenzolar -S-methyl and  protection of postharvest rock melons and Hami  melons from disease”. European Journal of Plant  Pathology, Vol. 106 (2000) 651 - 656.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"> &nbsp;</font></p>       ]]></body>
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